Preview

Злокачественные опухоли

Расширенный поиск

Мелкоклеточный рак легкого. Цитологическая диагностика

https://doi.org/10.18027/2224-5057-2022-12-1-36-43

Полный текст:

Аннотация

Цель статьи — оценить возможности цитологической диагностики нейроэндокринных опухолей легкого: мелкоклеточного рака и карциноидов. Изучены данные цитологического обследования 147 пациентов в течение года, материал был получен при видеобронхоскопии (n = 112), верификации метастазов в лимфатических узлах (n = 27) и плевральном выпоте (n = 8). Мелкоклеточный рак легкого диагностирован у 143 пациентов, что составило 23,9 % от числа всех карцином легкого. Карциноидные опухоли от числа нейроэндокринных новообразований легких составили 2,7 %, в трех наблюдениях типичный и в одном — атипичный карциноид. Определены клеточные признаки, характерные для мелкоклеточного рака легкого и карциноидов, наиболее значимые при цитологической диагностике (n = 11). По данным дискриминантного анализа, частота точной цитологической диагностики мелкоклеточного рака легкого и типичного карциноида составляет 96,69 %. Цитологический метод диагностики нейроэндокринных опухолей является надежным методом. При дифференциальной диагностике метастазов мелкоклеточного рака легкого от других опухолей и неопухолевых процессов в плевральных выпотах, кроме световой микроскопии, показано использование иммуноцитохимических исследований с нейроэндокринными маркерами.

Об авторах

О. Г. Григорук
КГБУЗ «Алтайский краевой онкологический диспансер»; ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет»
Россия

Ольга Г. Григорук, д. б. н., заведующая цитологической лабораторией; доцент кафедры биологической химии, клинической лабораторной диагностики

Барнаул



Д. А. Цой
КГБУЗ «Алтайский краевой онкологический диспансер»
Россия

Дмитрий А. Цой, врач цитологической лаборатории

Барнаул



Л. М. Базулина
КГБУЗ «Алтайский краевой онкологический диспансер»
Россия

Лариса М. Базулина, врач цитологической лаборатории

Барнаул



И. В. Вихлянов
КГБУЗ «Алтайский краевой онкологический диспансер»; ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет»
Россия

Игорь В. Вихлянов, д. м. н., Главный врач; профессор кафедры онкологии, лучевой терапии и лучевой диагностики с курсом ДПО

Барнаул



Список литературы

1. WHO Classification of Tumours Editorial Board. Thoracic tumours. Lyon (France): International Agency for Research on Cancer; 2021. (WHO classification of tumours series, 5th ed.; vol. 5). https://publications.iarc.fr/595.

2. Breitling L. P., Rinke A., Gress T. M. Recent survival trends in high-grade neuroendocrine neoplasms and lung cancer. Neuroendocrinology. 2020; 110 (3 -4): 225 -233. doi: 10.1159/000500883.

3. Varghese A. M., Zakowski M. F., Yu H. A, Won H. H., Riely G. J., Krug L. M., Kris M. G., Rekhtman N., Ladanyi M., Wang L., Berger M. F., Pietanza M. C. Small-cell lung cancers in patients who never smoked cigarettes. J. Thorac. Oncol. 2014; 9 (6):892-6. doi: 10.1097/JTO.0000000000000142.

4. Wang J et al. Genetic predisposition to lung cancer: comprehensive literature integration, meta-analysis, and multiple evidence assessment of candidate-gene association studies. Sci Rep. 2017; 7 (1):8371. doi: 10.1038/s41598-017-07737-0.

5. Quintanal-Villalonga Á., Chan J. M., Yu H. A., Pe’er D., Sawyers C. L., Sen T., Rudin C. Lineage plasticity in cancer: a shared pathway of therapeutic resistance. Nat Rev Clin Oncol. 2020; 17 (6):360 -371. doi: 10.1038/s41571-020-0340-z.

6. Abdel-Rahman O. Changing epidemiology of elderly small cell lung cancer patients over the last 40 years; a SEER database analysis. Clin Respir J. 2018; 12 (3):1093 -1099. doi: 10.1111/crj.12632.

7. Meerbeeck J. P., Fennell D. A., Ruysscher D. K. Small-cell lung cancer. Lancet. 2011; 12; 378 (9804):1741-55. doi: 10.1016/S0140-6736(11)60165-7.

8. Rudin C. M., Brambilla E., Faivre-Finn C., Sage J. Small-cell lung cancer. Nat Rev Dis Primers. 2021; 7 (1): 3. doi: 10.1038/s41572-020-00235-0.

9. Hou JM., Krebs M. G., Lancashire L., Sloane R., Backen A., Swain R. K., Priest L. J. C, Greystoke A., Zhou C., Morris K., Ward T., Blackhall F. H., Dive C. Clinical significance and molecular characteristics of circulating tumor cells and circulating tumor microemboli in patients with small-cell lung cancer. J Clin Oncol. 2012; 30 (5):525-32. doi: 10.1200/JCO.2010.33.3716.

10. Austin J. H., Yip R., D’Souza B. M., Yankelevitz D. F., Henschke C. I. Small-cell carcinoma of the lung detected by CT screening: stage distribution and curability. Lung Cancer. 2012; 76 (3):339-43. doi: 10.1016/j.lungcan.2011.11.017.

11. Früh M., Ruysscher D D, Popat S, Crinò L, Peters S, Felip E. Small-cell lung cancer (SCLC): ESMO clinical practice guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol. 2013; 24 Suppl 6: vi99-105. doi: 10.1093/annonc/mdt178.

12. Tay R. Y., Fernández-Gutiérrez F., Foy V., Burns K., Pierce J., Morris K., Priest L., Tugwood J., Ashcroft L., Lindsay C. R., Faivre-Finn C., Dive C., Blackhall F. Prognostic value of circulating tumour cells in limited-stage small-cell lung cancer: analysis of the concurrent once-daily versus twice-daily radiotherapy (CONVERT) randomised controlled trial. Ann Oncol. 2019; 30 (7):1114-1120. doi: 10.1093/annonc/mdz122.

13. Григорук О. Г., Лазарев А. Ф., Чимитов А. А, Ханхашанова Т. Д., Базулина Л. М., Шойхет Я. Н. Идентификация клеток, полученных из крови онкологических пациентов при гемоцитофильтрации. Российский онкологический журнал. 2018; 23 (2): 84–89. doi: http://dx.doi.org/10.18821/1028-9984-2018-23-2-84-89.

14. Stovold R., Blackhall F., Meredith S., Hou J., Dive C., White A. Biomarkers for small cell lung cancer: neuroendocrine, epithelial and circulating tumour cells. Lung Cancer. 2012; 76 (3):263 -8. doi: 10.1016/j.lungcan.2011.11.015.

15. Fernandez-Cuesta L, Perdomo S., Avogbe P., Leblay N., DelhommeT., Gaborieau V., Abedi-Ardekani B., Chanudet E., Olivier M., Zaridze D., Mukeria A., Vilensky M., Holcatova I., Polesel J., Simonato L., Canova C., Lagiou P., Brambilla C., Brambilla E., Byrnes G., Scelo G., Calvez-Kelm F., Foll M., McKay J., Brennan P. Identification of circulating tumor DNA for the early detection of small-cell lung cancer. EBioMedicine. 2016; 10:117-23. doi: 10.1016/j.ebiom.2016.06.032.

16. Almodovar K., Iams W. T., Meador C. B., Zhao Z., York S., Horn L., Yan Y., Hernandez J., Chen H., Shyr Y., Lim L. P., Raymond C. K., Lovly C. M.. Longitudinal Cell-Free DNA Analysis in Patients with Small Cell Lung Cancer Reveals Dynamic Insights into Treatment Efficacy and Disease Relapse. Thorac. Oncol. 2018; 13 (1):112-123. doi: 10.1016/j.jtho.2017.09.1951

17. Travis W. D. Update on small cell carcinoma and its differentiation from squamous cell carcinoma and other non-small cell carcinomas. Mod Pathol. 2012; 25 Suppl 1: S18-30. doi: 10.1038/modpathol.2011.150.

18. Pelosi G., Sonzogni A., Harari S., Albini A., Bresaola E., Marchiò C., Massa F., Righi L., Gatti G., Papanikolaou N., Vijayvergia N., Calabrese F., Papotti M. Classification of pulmonary neuroendocrine tumors: new insights. Transl Lung Cancer Res. 2017; 6 (5):513-529. doi: 10.21037/tlcr.2017.09.04.

19. Mukhopadhyay S., Dermawan J. K.., Lanigan C. P., Farver C. F. Insulinoma-associated protein 1 (INSM1) is a sensitive and highly specific marker of neuroendocrine differentiation in primary lung neoplasms: an immunohistochemical study of 345 cases, including 292 whole-tissue sections. Mod Pathol. 2019;32 (1):100-109. doi: 10.1038/s41379-018-0122-7.

20. Pelosi G., Rindi G., Travis W. D., Papotti M. Ki-67 antigen in lung neuroendocrine tumors: unraveling a role in clinical practice. J Thorac Oncol. 2014; 9 (3):273-84. doi: 10.1097/JTO.0000000000000092.

21. Pelosi G., Travis W. The Ki-67 antigen in the new 2021 World Health Organization classification of lung neuroendocrine neoplasms. Pathologica. 2021; 113 (5):377-387. doi: 10.32074/1591-951X-542.

22. Travis W. D. Pathology and diagnosis of neuroendocrine tumors: lung neuroendocrine. Thorac Surg Clin. 2014; 24 (3): 257-66. doi: 10.1016/j.thorsurg.2014.04.001

23. Григорук О. Г., Пупкова Е. Э., Базулина Л. М., Лазарев А. Ф. Использование цитологического материала при диагностике рака легкого. Злокачественные опухоли. 2017; 4: 13 -20. doi: 10.18027/2224-5057-2017-7-4-13-20.

24. Cytology: diagnostic principles and clinical correlates, Fifth edition isbn: 978-0-323-636-0 Copyright © 2021 by Elsevier Inc. 102-106.

25. Brambilla E., Moro D., Veale D., Brichon P. Y., Stoebner P., Paramelle B., Brambilla C. Basal cell (basaloid) carcinoma of the lung: a new morphologic and phenotypic entity with separate prognostic significance. Hum Pathol. 1992; 23 (9):993-1003. doi: 10.1016/0046-8177(92)90260-a.

26. Kalhor N., Zander D. S., Liu J. TTF-1 and p63 for distinguishing pulmonary small-cell carcinoma from poorly differentiated squamous cell carcinoma in previously Pap-stained cytologic material. Mod Pathol. 2006; 19 (8):1117–1123. doi: 10.1038/modpathol.3800629.


Рецензия

Для цитирования:


Григорук О.Г., Цой Д.А., Базулина Л.М., Вихлянов И.В. Мелкоклеточный рак легкого. Цитологическая диагностика. Злокачественные опухоли. 2022;12(1):36-43. https://doi.org/10.18027/2224-5057-2022-12-1-36-43

For citation:


Grygoruk O.G., Tsoi D.A., Bazulina L.M., Vihlyanov I.V. Small‑cell lung carcinoma. Cytological diagnosis. Malignant tumours. 2022;12(1):36-43. (In Russ.) https://doi.org/10.18027/2224-5057-2022-12-1-36-43

Просмотров: 172


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2224-5057 (Print)
ISSN 2587-6813 (Online)